细胞爬片是指让玻片浸在细胞培养基内，细胞在玻片上生长，在做免疫荧光、激光共聚焦、凋亡检测时，免不了要制备细胞爬片。制备时需要一些耗材，其中细胞培养板是一种必备耗材。具体的制备步骤如下：
1、爬片准备
1）爬片可用一般的盖玻片，也可用专用细胞爬片。可根据自己的需要，到染色时再将之切开，这样既保证了细胞均一性，又可同时做几个指标的染色剪裁成合适大小，置于6孔细胞培养板、12孔板或24孔板；
2）将剪裁好的爬片，置于浓硫酸中浸泡并过夜，第二天先用自来水冲洗20遍，再置于无水酒清中浸泡6小时，再用三蒸水冲洗3遍，放在玻璃培养皿中烘干后进行高压消毒。
3）高压后取出放入烤箱中烤干，放入超净台中备用。
2、细胞爬片
1）胰酶消化细胞后计数重悬细胞于完全培养基中。
2）加细胞时，根据玻片的大小，先在每个孔里准备放爬片的位置滴少量培养基，目的是使玻片与培养皿靠培养基的张力粘合到一起，然后放玻片，防止加细胞悬液时玻片漂起，造成双层细胞贴片。整个过程注意无菌操作。
3）根据自己的需要选择合适的细胞密度种入细胞培养板内即可。
4）待细胞贴壁后，可去上清加含药培养基。
5）按照实验设计，作用一定时间后取玻片。如果要做诸如24h，48h，72h等这样时间点的实验的话，将所需数量的爬片取出时应用酒精灯火焰烧一下针头和镊子。末取出的可接着继续培养。
3、细胞爬片固定
细胞爬片取出后，一般用PBS洗2遍，然后再做固定。如做凋亡的TUNEL染色时就避免洗，因为凋亡的细胞在洗的过程中有可能会脱落。在固定时可以选用冷丙酮、多聚甲醛、95％乙醇等固定液，以达到很好的固定效果。
以上是利用细胞培养板制备细胞爬片的具体过程，爬片的质量绝对了拍照的质量及实验数据的精准性，在操作时要严格按照流程进行。
