流式细胞分析是一种先进的细胞定量分析技术之一，它在细胞水平上通过单抗体对单个细胞或其他生物粒子进行多参数、快速的。细胞培养板是其常用的一种细胞培养耗材。利用流式细胞测定细胞存活率步骤如下：
多孔细胞培养板
- 取对数生长期的细胞，以4×105/ml密度接种于6孔细胞培养板上；
- 培养过夜后，用于相应实验处理；
- 收集处理后的细胞培养液至流式专用管；
- 加1mlPBS缓冲液清洗一次，清洗液加入管中；
- 胰酶消化收集细胞于上述管中；
- 1mlPBS缓冲液清洗剩余细胞一次，清洗液加入离心管；注：3－6步都收集于同一流式专用管。
- 800g离心6min，去上清；
- 加1mlPBS缓冲液重悬细胞，再次离心弃上清；
- 重悬细胞于500 l含5 g/ml碘化丙啶(propidiumiodide,PI)的PBS缓冲液中；
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避光冰上孵育10min,用流式细胞仪测定细胞存活率；
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PI可结合DNA，在一定波长的激发光作用下可发出荧光，其强度与DNA含量成正比，但其不能透过完整的细胞膜。而FS（前向散射）则是指示细胞大小的参数。因此，我们以FS为横坐标，PI的荧光值的对数（logPI）为纵坐标，就可将不同大小和不同荧光强度的细胞区分开：活细胞表现出较大的FS值和较弱的荧光强度；坏死的细胞碎片，由于丢失部分DNA，具有较小的FS值和较弱的荧光性；凋亡细胞的细胞膜具有通透性，细胞虽然聚缩变小，但核保持完整，所以显示出较小的FS值和较强的荧光强度。通过计算活细胞占所有细胞的百分率，即可得知细胞存活率。
流式细胞分析可以可以高速分析上万个，并能同时从一个细胞中测得多个参数，具有速度快、高、准确性好的优点。细胞培养板不止应用在流式细胞的分析中，在细胞克隆形成实验等细胞中初期实验条件摸索中发挥着重要作用。
